Влияние послеоперационного гипотиреоза на гормональную регуляцию сперматогенеза и функциональное состояние семенников у экспериментальных животных

Цель исследования: определить влияние послеоперационного гипотиреоза на сперматогенез у экспериментальных собак.
Материалы и методы: экспериментальные исследования были выполнены на 20 беспородных собаках-кобелях. Исследование было рандомизированным, выделены три группы. Первая группа – контрольная, контролем служили четыре собаки. Во второй группе была проведена гемитиреоидэктомия, третьей группе – субтотальная тиреоидэктомия. Операции проводились под общим обезболиванием. Объектом исследования служили семенники, щитовидная железа и кровь. В послеоперационном периоде был проведен биохимический и гистологический анализы удаляемой ткани щитовидной железы и семенников обследуемых собак. Определение гормонов в крови до и после операции проводилось с помощью хемилюминесцентного анализатора Roche Codas E601 (Швейцария).
Результаты: в ходе проведенного исследования в послеоперационном периоде у экспериментальных собак в сыворотке крови на 5–8-е сутки имело место уменьшение тестостерона на 15%, а на 20-е – с 15 до 30,1%; у собак после субтотальной тиреоидэктомии этот показатель на 20-е сутки составил 41,1% (р < 0,005). Изменение ФСГ и пролактина в крови было различно во всех группах. Показатель ФСГ на 5–8-е сутки имел достоверное повышение, а на 20-е – снижение, а показатель пролактина наоборот: уменьшение на 5–8 сутки и повышение на 20-е сутки. Гормональная активность щитовидной железы была снижена, особенно после субтотальной тиреоидэктомии. Морфологические исследования показали заметное снижение активности сперматогенного слоя и интерстициальный отек семенников на 5–8-е сутки в обеих группах. На 30-е сутки в обеих группах после операции отмечается заметное снижение как сперматогенного слоя, так и интерстициальных клеток семенников.
Заключение: результаты экспериментальных исследований показали, что в результате гемитиреоидэктомии и субтотальной тиреоидэктомии отмечаются заметное изменение регуляции сперматогенеза и структурно-функциональные изменения семенников экспериментальных животных, особенно в йододефицитом регионе.

1. Каркищенко В.Н, Семенов Х.Х., Каркишенко Н.Н. Влияние острой гипербарической гипоксии на репродуктивную функцию лабораторных крыс и мышей. Биомедицина 2015; 1: 60-65.

2. Ariyaratne H.B., Mills N., Mason I.J., Mendis-Handagama S.M. Effects of thyroid hormone on Leydig cell regeneration in the adult rat following ethane dimethane sulphonate treatment. Biol. Reprod. 2000; 63: 1115-23.

3. Bassett J.H., Harvey C.B. & Williams. Mechanisms of thyroid hormone receptor-specific nuclear and extra nuclear actions. Molecular and Cellular Endocrinology. 2003; 213:1-11.

4. Budi A., Legge F.S., Hentlein H, Yarovsky I. Electric field effects on insulin chain-B conformation. J. Phys. Chem. B. 2005; 109(7): 22641-22648.

5. Carle A., Pedersen I.B., Knudsen N., Perrild H., Ovesen L., Andersen S., et al. Hypothyroid symptoms fail to predict thyroid insufficiency in old people: a Population-Based Case-Control Study. Am J Меd. 2016; 129:1082- 92.

6. Cerillo A.G., Storti S., Kallushi E., Haxhiademi D., Miceli A., Murzi M., et al. The low triiodothyronine syndrome: a strong predictor of low cardiac output and death in patients undergoing coronary artery bypass grafting. Ann. Thorac. Surg. 2014: 97: 2089-95.

7. Gilleron J., Nebout М., Scarabelli L., Senegas-Balas F., Palmero S., Segretain D., Pointis G. A potential novel mechanism involving connexin 43 gap junction for control of Sertoli cells cell proliferation by thyroid hormones. Journal of Cellular Physiology. 2006; 209:153-161.

8. Hamouli-Said Z., Tahari F., Hamoudi F., Hadj-Bekkouche F. Comparative study of the effects of pre and post natal administration of a thyroid drug on testicular activity in adult rat. Folia Histochem Cytobiol. 2007; 45 Suppl.l 1:51- 57.

9. Hermandez A. Thyroid hormone Role and economy in the Developing testis. Vitamins and Hormones, 2018, 106: 473-500.

10. Jannini E.A., Olivieri М., Francavilla S., Gulino A., Ziparo E., Darmiento M. Ontogenesis patteilull^yroidliormone receptor in the rat testis. Endocrinology. 1990;126:2521-2526.

11. Kotwal SK, Kotwal S, Gupta R Singh JB, Mahajan A. Cerebellar ataxia as presenting feature of hypothyroidism. Arch Endocrinol Metab. (2016) 60:183-5.

12. Lombardo F., SgdrolT, Salacone P., Gilio B., Gandini L., Dondero F., Jannini E., Lenzi A. An-drogens and fertility. J. Endocrinol. Invest. 2005; 28(3):51-55.

13. Mendis-Handagama S. Effects of thyroid hormones on Leydid cells in the postnatal testis //Histology and Histopathology. 2004. 19:985-997.

14. Odermatt A., Strajhar P., Engeli R.T. Disruption of steroidogenesis: cell models for mechanistic investigations and as screening tools. J. Steroid Biochem. Mol. Biol. 2016;158:9-21.

15. Ono Y., Ono S., Yasunaga H., Matsui H., Fushimi K., Tanaka Y. Clinical characteristics and outcomes of myxedema coma: analysis of a national inpatient database in Japan. J Epidemiol. (2017) 27:117-22.

16. Ozgtiner М., Senol A., Ural М., Ifler M. The histological changes caused by experimental hypothyroid in the testicular tissue of adult rats. Suleyman Demirel University. J Eacult. Med. 2004;11:1- 6.

17. Palace M.R. Perioperative management of thyroid dysfunction. Health Servl Insights. (2017) 10:1178632916689677.

18. Roger Т., Cornelia F. Currently available murine leydigcell lines can be applied to study early steps of steroidogenesis bat not testosterone synthesis. Hellion, 2018.00527.